激光共聚焦顯微鏡可以觀察到細胞內(nèi)已經(jīng)標(biāo)記好的蛋白質(zhì)和分子，為生物學(xué)研究提供了更直觀的觀測方法。如今，激光共聚焦成像已經(jīng)是一個非常常規(guī)的實驗操作，應(yīng)用于生物學(xué)各個研究領(lǐng)域中。
在細胞實驗中，如果要進行一次激光共聚焦成像，除了要知道相關(guān)的顯微鏡參數(shù)設(shè)置和操作以外，樣品的準(zhǔn)備也是非常重要的一環(huán)。
1.傳統(tǒng)方法：
由于激光共聚焦實驗對觀測耗材的底部有著比較高的要求，普通的培養(yǎng)皿，培養(yǎng)板或者培養(yǎng)瓶都不能直接用于激光共聚焦成像。
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比較常用的是使用170μm左右厚度的蓋玻片作為激光共聚焦成像的細胞載體。但是使用蓋玻片，在實驗操作上是非常麻煩的，如果買的是國產(chǎn)的蓋玻片，首先要做的一步是將蓋玻片清洗并且烘干滅菌，才能開始使用。
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細胞爬片，雖然不需要清洗，但是還是需要進行包被才能讓細胞正常貼壁生長。通常是將處理好爬片直接放在多孔板中，然后鋪細胞，熒光染色后，再用鑷子將爬片拿出，反過來放在滴有封片劑（甘油配置）的載玻片上，再進行成像。如圖一所示：
圖一：使用蓋玻片和細胞爬片的做免疫熒光方法示意圖。
耐思細胞爬片
2.無需爬片的新方法：
這里要介紹的新方法，大大簡化了樣品準(zhǔn)備流程，需要用到專為共聚焦實驗設(shè)計的共聚焦培養(yǎng)皿。共聚焦培養(yǎng)皿的底部為0.16-0.19mm的硼硅酸鹽玻璃，結(jié)合了標(biāo)準(zhǔn)培養(yǎng)皿/板的便利性和蓋玻片的成像優(yōu)勢，可提供高倍放大顯微鏡及共聚焦圖像分析所需的最佳光學(xué)特性。
耐思玻底培養(yǎng)皿/板
所有的操作都在培養(yǎng)皿中進行，不再需要鑷子以及繁瑣的清洗，滅菌，包被程序（流程如圖二所示）
操作流程：
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在超凈臺中打開共聚焦專用培養(yǎng)皿的滅菌包裝，拿出培養(yǎng)皿，加入細胞懸液，蓋上皿蓋，放入培養(yǎng)箱中靜置，等待細胞貼壁。常規(guī)細胞培養(yǎng)，待細胞長置合適密度再取出，進行免疫熒光染色。
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吸出培養(yǎng)基，以PBS清洗細胞，再用2%的多聚甲醛PBS溶液固定細胞。
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20分鐘后，吸出固定液，加入0.1%Triton X-100
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10分鐘后，吸出Triton，清洗細胞后加入BSA封閉。
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加入抗體熒光染色后，吸出所有試劑，加入封片劑，可以開始共聚焦顯微成像。
方法優(yōu)勢總結(jié)：
使用共聚焦培養(yǎng)皿還有個好處：往往一個共聚焦掃描成像持續(xù)時間很長，培養(yǎng)皿中的液體非常容易揮發(fā)，共聚焦培養(yǎng)皿有皿蓋，可以減少揮發(fā)。
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一個培養(yǎng)皿完成細胞培養(yǎng)－染色－成像等系列操作，無需包被，無需爬片，操作簡便；
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在培養(yǎng)皿里的操作對于操作技術(shù)的要求相對更低，也更便捷；
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培養(yǎng)皿可使用皿蓋減少蒸發(fā)，杜絕揮發(fā)對成像的影響。
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